什么是浮游生物_浮游生物有哪些_浮游生物(2)

瓶式采水器制做简单，使用方便，但采水深度不大，一般只适合于5米深度以内的水域。另外，由于进水管的管口不大，不易采得大型浮游动物。因此应与定量网配合使用。

(3)沉淀器：用于沉淀已固定的水样，沉淀器可以1000毫升广口瓶或分液漏斗代用。

(4)计数框：用于在显微镜下统计浮游生物的数目。

(5)测微尺：测量视野面积。

(6)鲁哥氏液和福尔马林液：用于固定水样中的浮游生物（鲁哥氏液的配制方法见本书

第二章第五节）。

(7)显微镜、虹吸管、30毫升定量瓶、标本瓶等

二、定性调查

1.采样

(1)浮游植物采样。采集浮游植物时，可用25#定性网在选定的采集样点上进行水平拖取。在水库和中、小型湖泊采集时，可将定性网缚于船上，以慢速拖曳，时间一般为10～20分钟。如在坑塘等小水体中，可将定性网缚于长2米的竹竿上，将网置于水中，使网口在水面以下深约50厘米处，做“∞”形反复拖曳，拖曳速度每秒约20～30厘米，时间为3～5分钟。然后将网提起抖动，待水滤去后，打开集中杯，倒入贴有标签的标本瓶中。如果采样点距离学校较近，可将样品分装两瓶，1瓶按100毫升样品加入1.5毫升鲁哥氏液的比例进行固定，也可用4％福尔马林液固定样品，留作日后进行属种鉴定，另1瓶不进行固定，带回学校作活体观察之用。

(2)浮游动物采样。采集浮游动物的方法与上述浮游植物的采集方法相同。在网具方面，采集原生动物和轮虫可用25#定性网，但采集枝角类和桡足类，则应改用13#—18#的定性网捞取。什么是浮游生物

2.观察鉴定

将新鲜或固定的水样，置于显微镜下进行属种鉴定。对于优势种应该鉴定到种，一般种类可鉴定到属。鉴定结束后，应将鉴定的种类列出名录。对中学生来说，观察鉴定各种浮游生物是一件难度很大的工作，教师应结合观测点的浮游生物种类，事先向学生讲解它们的形态、结构特征，使学生对各类浮游生物有所了解。在镜检定性时，应参照淡水浮游生物图谱一类资料，进行种类鉴定。如果鉴定到种属有困难，可按蓝藻、裸藻、绿藻、金藻、黄藻、硅藻、甲藻、原生动物、轮虫、枝角类和桡足类等大类进行鉴定。

三、定量调查

1.采样

(1)浮游植物采样。在每个样点上，根据水的深度用采水器采集水样。如果水深不超过2米，可以在半米处取水；如果水深2～3米，可分别在表层（离水面半米）及底层（离水底半米）各采一次水样；如水深在3米以上，则应增加中层采水，大约每隔1米半左右，加采一个水样。每次所采水样取1000毫升，立即加入15毫升鲁哥氏液固定，留作室内定量分析之用。

(2)浮游动物采样。对于湖泊、水库等大型水域中的浮游动物，可用中型20定量网垂直拖取。其方法是将网放在距水底0.5米处，然后垂直上拖，以0.5米/秒的均匀速度拖取。#

网自水中提出后，应将网口露出水面，不能再次浸入水中，而网衣部分，应反复入水，摆动冲洗，再行起水，如此反复数次，待网中水滤去后，打开集中杯，将样品置于收集瓶中，加

2入鲁哥氏液或福尔马林固定。定量网的上述采样，其水样体积计算方法可按πr×H公式推

算水样体积（r为网口直径，H为拖取的深度）。

对于坑塘等小型水域，可用舀水的方法采集水样，并及时进行固定。

2.水样的沉淀浓缩

将已固定的水样，放入1000毫升沉淀器中静置24小时，使其充分沉淀。然后缓慢吸出上层清液，将剩下的20毫升左右的沉淀物转入30毫升定量瓶中，再用吸出的清液冲洗沉淀器3次，每次的冲洗液仍转入定量瓶中，并使最终容量为30毫升。如果标本需长时间保存，应加入3～4毫升福尔马林。定量瓶外应贴上标签，标签格式如下：

水样瓶标签

在沉淀浓缩过程中，应注意虹吸沉淀清液的速度，一般吸完980毫升水样，应将时间控制在20～30分钟之间，不应过快，以免搅动了沉淀而前功尽弃。如万一搅动了沉淀，则应重新沉淀。

3.样品的定量

浮游生物定量的方法很多，现行的方法主要有以下三种。

(1)个体计数法。又分为滴水计数法和视野计数法两种。①滴水计数法。本项工作进行的方法步骤是：用测微尺测量显微镜的视野直径，备用；选择1个管口较平、管径较细的滴管，用小量筒测出其每毫升的平均滴数，备用；定量时，将样品充分摇匀，用滴管快速取出一滴样品，滴在载玻片上，加盖盖玻片，用液体石蜡封好盖玻片四周，置于显微镜下进行计数；计数时，一般最好计数半片，如果数行数，则应顺盖下去的方向，来回数等距离的数行；每份样品计数两次，误差不超过5％即可，如超过则需计数第三片。

计数完毕后，按以下公式求算每升水中浮游生物的个数：